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大鼠低氧誘導因子1α(HIF-1α)ELISA試劑盒技術說明書
發(fā)布時間:2025/10/13瀏覽:88次
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  本試劑盒采用雙抗體夾心法原理,通過預包被抗大鼠HIF-1α單克隆抗體的酶標板捕獲樣本中的目標蛋白。檢測流程包括:樣本與捕獲抗體孵育形成抗原-抗體復合物后,依次加入生物素化二抗和HRP-鏈霉親和素進行信號放大,最終通過TMB顯色反應在450nm波長下測定吸光度值。該設計實現了對血清、血漿及組織勻漿中pg/mL級HIF-1α的高靈敏度檢測,其濃度與OD值呈正相關。試劑盒保存條件建議為-20℃長期儲存(6個月有效期),頻繁使用時短期存放于2-8℃。

  試劑盒核心組件包括:

  1) 預包被酶標板,采用抗大鼠HIF-1α單克隆抗體固化于96孔板,確保高親和力捕獲;

  2) 標準品,提供0-64 pg/mL梯度濃度凍干品,用于繪制標準曲線;

  3) 檢測抗體系統,含生物素化二抗及HRP-鏈霉親和素復合物,實現信號放大

  4) 顯色試劑,含TMB底物和終止液,顯色反應在10-30分鐘內完成

  5) 配套緩沖液,包括濃縮洗滌液(25×)、樣品稀釋液及酶結合物稀釋液,需按說明書稀釋使用。所有組分需嚴格避光保存,其中酶標板、標準品及HRP結合物建議-20℃長期保存,短期使用可置于2-8℃。

  樣本處理需遵循以下規(guī)范:

  1) 血清/血漿采集后室溫靜置10-20分鐘,2000-3000轉/分鐘離心20分鐘去除纖維蛋白原,取上清液立即檢測或分裝保存于-80℃;

  2) 組織勻漿按1:9比例加入預冷PBS,用勻漿器研磨后4℃離心(3000-5000轉/分鐘)10分鐘,取上清液檢測。所有樣本避免反復凍融,溶血、脂血或微生物污染的樣本可能導致假陽性。稀釋液推薦使用試劑盒配套的緩沖體系,避免離子強度差異影響結合效率。特殊樣本需通過預實驗驗證回收率,必要時調整稀釋倍數。

  試劑盒性能指標如下:

  1) 靈敏度,檢測限達16-43 pg/mL,可精準識別低豐度樣本

  2) 特異性,抗大鼠HIF-1α抗體無交叉反應,與HIF-1β等相似蛋白無結合

  3) 精密度,板內變異系數(CV)<10%,板間CV<15%,符合定量分析要求

  4) 線性范圍,標準曲線覆蓋0-64 pg/mL,R2值≥0.99;5)回收率,在80%-120%范圍內,驗證樣本基質兼容性。建議每批次實驗設置復孔及質控樣本(如添加標準品的臨床樣本),確保數據可靠性。

  實驗操作需嚴格遵循以下步驟:

  1) 標準品梯度稀釋,將凍干標準品用稀釋液復溶后,按64→0 pg/mL等比稀釋,每個濃度設雙孔;

  2) 加樣與孵育,每孔加入100μL標準品/樣本,37℃孵育90分鐘,洗板3次去除未結合物。

  3) 酶結合物反應,加入生物素化抗體100μL,37℃孵育60分鐘后洗滌,再加入HRP-鏈霉親和素100μL,避光孵育30分鐘。

  4) 顯色與終止,每孔加入TMB底物100μL,室溫避光反應15分鐘,最后加入50μL終止液終止反應。關鍵注意事項包括:孵育時間誤差控制在±5分鐘內,洗滌時確保每孔注滿洗滌液并充分拍干,避免氣泡干擾讀數。建議使用多通道移液器加樣,減少操作差異。數據分析需采用四參數邏輯回歸擬合標準曲線,通過酶標儀450nm波長測定各孔OD值。計算時需扣除空白孔背景值,樣本濃度通過標準曲線插值獲得,超出線性范圍需重新稀釋后檢測。典型結果表現為:標準品OD值隨濃度升高呈梯度變化,陰性對照OD值應<0.1,臨界值(Cut-off)通常為陰性對照平均OD值的2.1倍。

  異常數據排查建議:

  1) 復孔CV>15%時需重復實驗;

  2) 標準曲線R2<0.95時檢查稀釋準確性;

  3) 高背景值可能因洗滌或試劑污染導。最終報告需標注檢測范圍、稀釋倍數及質控數據,確保結果可追溯。

  注:以上僅供參考,不作為實際數據,實驗需嚴格

  遵循說明或咨詢技術老師。

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